一、制備顯微標本的切片法

　　這是*常用的切片法。以石蠟作為組織的填充支持介質(zhì)，將整塊組織加以包埋，*后凝固成均勻一致的固態(tài)結構。用切片機制取*薄的切片。為了讓石蠟能浸入組織內部，需將組織經(jīng)過(guò)脫水等處理。過(guò)程大致如下：

　?、殴潭ǎ荷飿吮久撾x機體或培養環(huán)境，細胞會(huì )發(fā)生自溶，腐敗分解。因此，需用固定劑處理，使蛋白質(zhì)凝固停止瀕死或死后變化。凡供******保存的標本都需經(jīng)固定處理。

　　常用的固定劑是甲醛、乙醇等，能使蛋白質(zhì)凝固。還有由幾種試劑配成的固定液，例如Carnoy固定液，由無(wú)水酒精、氯仿、冰醋酸配成，固定力更快更強，不含水分，可避免水溶性物質(zhì)如糖原等在固定過(guò)程中損失。

　?、泼撍菏菍⒔M織細胞所含水分除去。通常用乙醇（Alcohol，酒精），濃度遞升到100%。此過(guò)程還使組織塊進(jìn)一步硬化。

　?、峭该鳎菏怯眉饶苋苡诩兙凭帜苋诮馐灥挠袡C溶劑，將組織中的酒精取代，以便石蠟浸入。通常用二甲苯（xylene）為透明劑。

　?、冉灒涸跍叵鋬冗M(jìn)行。已透明的組織塊放入加熱融解的石蠟中，讓石蠟浸透組織，作為支持介質(zhì)。

　?、砂瘢簩⒁呀灥慕M織塊放入熱融的包埋石蠟中，迅速冷凝，組織決便被蠟包埋。

　?、是衅河们衅瑱C。常用的切片機有輪轉式、平推式的。用輪轉式的易于切出連續切片。切片厚度隨制片目的而調整。教學(xué)標本厚度多是5~6μm。

　?、速N片烤干：石蠟切片在溫水上展平后，移在玻片上，烤干，即可供染色處理。染色后用樹(shù)膠、蓋坡片封固，可******保存。

　　二冷凍切片法

　　冷凍切片法是借組織在低溫下，凍結變硬而達到符合切片要求。冷凍切片法需有冷凍切片機，或在普通切片上配制冷設施。恒冷切片機是高級冷凍切片設備。它有一個(gè)恒冷箱，標本致冷臺和切片機都裝在箱內。恒冷箱的作用類(lèi)似冰箱，可在一定范圍內調整溫度，其結構有利于保持箱內恒定低溫，減少箱門(mén)打開(kāi)時(shí)環(huán)境溫度的干擾。切片機的輪轉把手裝在箱外，便于操縱切片。

　　冷凍切片法的優(yōu)點(diǎn)是：在處理得當時(shí)，它可以******限度地保持組織的新鮮狀態(tài)。并且，由于不需經(jīng)脫水、透明、浸蠟等過(guò)程中有機溶劑的處理，及濕箱浸蠟熱的影響，甚至可不經(jīng)固定。所以能很好地保存組織細胞的各種成分和酶的活性，因此在酶的組織化學(xué)研究中常用此切片法。

　　二、顯示標本結構成分的染色法

　　一蘇木素伊紅染色法（HE染色法）

　　為*常用的染色法。該法應用于各種組織的染色，是組織學(xué)技術(shù)的基本方法，對任何液體固定的組織和各種包埋的切片均可使用，只是對不同包埋的切片法處理略有不同。下面簡(jiǎn)介石蠟包埋切片的HE染色法。

　　1、脫蠟：石蠟切片的組織內部充滿(mǎn)石蠟，不能使水溶性染液著(zhù)色，因此在染色前必須*先用二甲苯將石蠟脫掉，共兩次。

　　2、下行入水：將已脫蠟的標本浸入無(wú)水酒精及各級酒精，使組織逐步接近水。3、蒸餾水略洗。

　　4、蘇木素溶液染色約5—15分鐘

　　5、自來(lái)水洗去多余染料。

　　6、入稀釋的鹽酸酒精溶液中分色，邊分色邊鏡檢，至核呈紅紫色，細胞質(zhì)無(wú)

　　色為合適。

　　7、分色后用自來(lái)水或加數滴氨水堿化，直至細胞核變成藍色。這一步驟也可稱(chēng)為“藍化”。

　　8、入蒸餾水洗去堿性水分。

　　9、入70%酒精→80%酒精各5分鐘。

　　10、入伊紅染液染色30秒至數分鐘。

　　11、以95%酒精對伊紅分色，至胞漿，結締組織等呈桃紅色。

　　12、上行脫水：染色后的切片，因組織內含水而不透明，不能清晰地觀(guān)察其微細結構。因此，須將組織內的水分經(jīng)各級酒精→無(wú)水酒精逐步置換，*后進(jìn)入不含水份的透明劑內。

　　13、透明：入二甲苯透明劑，二次（各數分鐘）。

　　結果：細胞核藍紫色，胞漿、膠原纖維、肌纖維為桃紅色，嗜酸性顆粒為鮮紅色，彈性纖維呈明亮桃紅色。